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分子標(biāo)記——AFLP原理和操作步驟

2018
09-30

09:28:37

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來(lái)源:上海古朵生物科技有限公司
  一、原理
 
  也是通過限制性內(nèi)切酶片段的不同長(zhǎng)度檢測(cè)DNA多態(tài)性的一種DNA分子標(biāo)記技術(shù)。但AFLP是通過PCR反應(yīng)先把酶切片段擴(kuò)增,然后把擴(kuò)增的酶切片段在高分辨率的順序分析膠上進(jìn)行電泳,多態(tài)性即以擴(kuò)增片段的長(zhǎng)度不同被檢測(cè)出來(lái)。實(shí)驗(yàn)中酶切片段首先與含有與其共同粘末端的人工接頭連接,連接后的粘末端順序和接頭順序就作為以后PCR反應(yīng)的引物結(jié)合位點(diǎn)。實(shí)驗(yàn)中,根據(jù)需要通過選擇在末端上分別填加了1~3個(gè)選擇性核苷的不同引物,可以達(dá)到選擇性擴(kuò)增的目的。這些選擇性核苷酸使得引物能選擇性地識(shí)別具有特異配對(duì)順序的內(nèi)切酶片段,進(jìn)行結(jié)合,導(dǎo)致特異性擴(kuò)增。
 
二、實(shí)驗(yàn)試劑
 
  酶、EcoRI/ MseIEcoRI/ MseI接頭、E+A引物M+C引物、T4DNALigaseE和M引物、瓊脂、過硫酸胺、丙烯酰胺、尿素、硝酸銀、甲酰胺、 dNTPs、 二甲苯青、冰醋酸、玻璃硅烷、
 
  三、操作步驟
 
  (一) 基因組DNA提取和純化
 
  、參考實(shí)驗(yàn)一的大量提取DNA實(shí)驗(yàn)方法,
 
  、DNA的純化:用0.8%瓊脂糖凝膠(含EB0.5μg/ml)電泳檢測(cè)片段大小,取出其中的1/3已提取的基因組DNA進(jìn)行純化,首先用TE緩沖液補(bǔ)滿至總體積50ul,再等體積苯酚//異戊醇(25:24:1)、/異戊醇(24∶1)各抽提一次, 離心吸上清液于Eppendorf管中,加入1/10體積的NaAC和二倍體積預(yù)冷的無(wú)水乙醇,-20℃放置2h以上,10000g離心10min,用70%的乙醇漂洗DNA沉淀2次 ,風(fēng)干后溶于30μlTE緩沖液中,UV-2401PC(島津)紫外分光光度計(jì)檢測(cè)A260、A280值并定量,再用0.8%瓊脂糖凝膠(含EB0.5μg/ml)電泳檢測(cè)片段大小。
 
  注:0.1-0.2g組織可用100ul溶液E溶,0.5g組織,溶液E可增加至300ul,此時(shí)DNA濃度大約為100ng/ul。
 
  (二)限制性酶切及連接
 
  在0.2ml離心管中加入:模板量約為250ng,2.5μl 10×酶切緩沖液, 2.5μl 10×T4DNA連接酶切緩沖液,5U EcoRⅠ, 5U MseⅠ,2U T4連接酶,50pmol MseⅠ接頭(序列見表2),雙蒸水補(bǔ)至25μl。用PE公司PCR擴(kuò)增儀設(shè)定37℃過夜反應(yīng)后,于65℃20min滅酶活,-20℃保存,作為預(yù)擴(kuò)增模板。
 
  (三)預(yù)擴(kuò)增
 
  取3μl酶切連接產(chǎn)物,加入75ng E+A,75ng M+C引物,15mmol/L Mg2+,25mmol/L dNTPs,1U Tag酶,3μl 10×PCR緩沖液,加雙蒸水補(bǔ)至30μl。反應(yīng)參數(shù)為:94℃90s;94℃30s,56℃1min,72℃1min,30循環(huán);72℃10min(PE公司PCR儀)。反應(yīng)結(jié)束后,用0.8%瓊脂糖凝膠(含EB0。5μg/ml)電泳檢測(cè)擴(kuò)增產(chǎn)物(見圖①),取3μl產(chǎn)物釋稀50倍,用作選擇性擴(kuò)增模板。
 
  (四)選擇性PCR擴(kuò)增
 
  取釋稀后的產(chǎn)物3μl,加入EcoRⅠ選擇性引物、MseⅠ選擇性引物各75ng,15mmol/L Mg2+,25mmol/L dNTPs,1UTag酶,3μl 10×PCR緩沖液,加雙蒸水補(bǔ)至30μl。反應(yīng)參數(shù)為:94℃90s;94℃30s,65℃1min,72℃1min,13循環(huán)(每循環(huán)降0。7℃);94℃30s, 56℃1min,72℃1min,25循環(huán);72℃5min(PE公司PCR儀),先用0.8%瓊脂糖凝膠(含EB0.5μg/ml)電泳檢測(cè)先擇性擴(kuò)增產(chǎn)物。
 
  (五)凝膠電泳
 
  擴(kuò)增產(chǎn)物用6%變性聚丙烯酰胺膠(厚度0.5mm)和1×TBE電泳緩沖液電泳分離(BIO-RAD公司測(cè)序電泳儀)。拔出梳子,140W恒功率預(yù)電泳30分鐘,溫度達(dá)到47~49℃。務(wù)必使每個(gè)孔清洗出尿素。選擇性擴(kuò)增產(chǎn)物中加入等體積上樣緩沖液(98%甲酰胺,10mmol/LEDTA,0.25%二甲苯青,0.25%溴酚藍(lán))94℃變性5min(PE公司PCR儀),結(jié)束后迅速置于冰上直到點(diǎn)樣。每個(gè)泳道加樣8μl。一開始用100W恒功率電泳約2分鐘,使樣品迅速集中到孔底部,再調(diào)到60W恒功率電泳,溫度保持在43℃左右,至二甲苯青FF至玻璃板2/3處,結(jié)束電泳。
 
  (六)銀染
 
  固定液:取100ml冰醋酸到900ml去離子水或雙蒸水中。染色液:1g AgNO3 ,1.5ml 37% 甲醛,加去離子水至1L。顯色液:30g Na2CO3,1.5ml 37% 甲醛,2mg硫代硫酸鈉,加去離子水至1L。
 
 ?、?電泳完畢后,將粘有凝膠的玻璃板置入用于銀染的塑料盤中。
 
 ?、?固定:加入固定液,在搖床上輕微震蕩30min。固定結(jié)束后,固定液保留。
 
 ?、?加入去離子水漂洗3次,每次2min。
 
 ?、?染色:將凝膠放入染色盤中,倒入染色液(4℃),在搖床上輕微震蕩30min。用去離子水漂洗凝膠10秒鐘后,置入顯色盤中。
 
 ?、?顯色:加入顯色液(4℃),在搖床上輕微震蕩直至條帶數(shù)不再增加為止。
 
  ⑥ 終止:加入b步驟用后的固定液,來(lái)回漂幾分鐘。達(dá)到效果后,用蒸餾水漂洗幾分鐘。
 
 ?、?去除凝膠和玻璃板上的水珠后,放在白光燈箱上用Nikon數(shù)碼相機(jī)拍照。
 
  (七)數(shù)據(jù)分析
 
  用BIO-RAD公司的Quantity One 軟件統(tǒng)計(jì),再用NTSYS軟件計(jì)算出遺傳相似性系數(shù),用UPGMA法進(jìn)行聚類分析構(gòu)建聚類圖。
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