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海藻及海洋細(xì)菌的DNA制備方法

2021
11-02

09:40:13

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來源:上海古朵生物科技有限公司

眾suo周知,海藻由于富含多糖,DNA提取是一大難題,以下是在試驗過程中收集的海藻DNA制備方法,經(jīng)試驗驗證可行,現(xiàn)在貼出來,以觴眾戰(zhàn)友。

一、可大量培養(yǎng)的海洋細(xì)菌
1、取1ml目的菌菌液至1.5ml的EP管中,5000r/m離心5分鐘棄上清,菌體加入500μl水洗滌一次,5000r/m離心5分鐘,棄上清,向菌體中加入200μl懸浮緩沖液。
2、在200μl懸浮緩沖液中加人55℃Tirs飽和酚200μl和10%的SDS 45μl混勻,在微型蝸旋混和儀上混勻,55℃溫浴15分鐘,并且不斷振蕩混勻。
3、12000r/m離心5分鐘,取上層水相移至新的EP管中。
4、加入等量的lv仿/異戊醇抽提,12000r/m離心5分鐘,轉(zhuǎn)移上層水相至新管,反復(fù)抽提至界面澄清。
5、取上層水相加入0.1倍的3M醋酸鈉和2.5倍體積的無水乙醇混勻于-20℃放置2h沉淀DNA。
6、12000r/m離心20分鐘,沉淀DNA棄上清,用預(yù)冷的的70%的乙醇洗2次,在室溫下晾干,加入40μl無菌水溶解,-20℃保存。
本方法用于海洋假單孢菌、以及部分蘭細(xì)菌(藍(lán)藻)可行。

二、從海水中制備細(xì)菌/浮游生物的混合DNA
海洋浮游生物生物量較小,往往需要采集大量的海水樣本,過濾收集特定粒徑的浮游生物。這里介紹的是一種簡單、快速、實用的符合環(huán)境指示基因PCR擴(kuò)增需要的浮游生物模板DNA制備方法。
1、取40 μL水樣,與等體積0.25 mol/L NaOH混合,并于25 ℃溫育過夜。
2、99 ℃加熱10 min,冷卻至室溫,簡單離心收集溶液,依次加入8 μL 1 mol/L HCl,20 μL 0.5 mol/L Tris-HCl(pH 8.0)和10 μL 2% (v/v,體積分?jǐn)?shù))Triton X-100,混合并離心。
3、將混合溶液再次在99 ℃加熱10 min。
4、制備的模板DNA溶液pH值 在8到9之間,可直接用于PCR擴(kuò)增反應(yīng),不需要其它純化處理。
本方法用于海洋弧菌可行。

三、褐藻
Approximately 500mg of fresh leaves were ground in liquid nitrogen, transferred to the lysis buffer (1.5% CTAB, 75mM Tris-HCl, 1.5mM EDTA, 1.0M NaCl, 0.5mg/ml RNase A), and incubated for 30 min at 65℃. Proteinase K (final concentration of 10 mg/ml) was added and incubation continued for 30 min at 37℃. An equal volume of phenol:chloroform:isoamyl alcohol (25:24:1) was added, mixed and the sample centrifuged at 2,300g for 20 min. Approximately 500μl of upper aqueous layer was transferred to a new tube and 50μl of 10% CTAB (10% CTAB, 0.7 M NaCl), an equal volume of phenol:chloroform:isoamylalcohol (25:24:1) was added, mixed and the sample centrifuged at 2,300g for 20 min. The upper aqueous layer was transferred to a new tube and an equal volume of 1% CTAB (10% CTAB, 50mM Tris-HCl, 10mM EDTA) was added, mixed and the sample centrifuged at 1,000g for 10 min. The DNA was precipitated. The DNA was washed with 70% ethanol. Then the DNA pellet was air-dried and redissolved in TE (Tris-EDTA) buffer.
本方法用于鼠尾藻,可行。

四、紅藻
1、取1g藻體,用蒸餾水洗凈,加入大約2ml提取緩沖液[4% SDS, 0.05 M Tris. HCl,pH8.0, 0.1M EDTA, 0.2MnaCl], 在0℃冰浴中充分研磨后,加蛋白酶K(終濃度100ug/ml),在50℃水浴 間斷震蕩3.5-4小時。
2、15,000 rpm離心10min,取上清液,加等體積的酚抽提, 15,000rpm離心10min。
3、取上清液,再以酚/lv仿/異戊醇(25:24:1)及l(fā)v仿抽提,15,000rpm離心10min。
4、取上清液,加入二倍體積的無水乙醇使DNA沉淀,離心,用70%的乙醇洗沉淀兩次。
5、干燥后,溶解在50ul無菌TE(10mMTris, 0.1mM EDTA,PH8.0)中,-20℃儲存?zhèn)溆谩?br/>本方法用于紫菜孢子體、紫菜配子體、江蘺、龍須菜可行。

五、甲藻
1、取對數(shù)生長期的培養(yǎng)物,在 4 ℃下用 冷凍離心機(jī)6000 rpm離心 6 min,收集藻細(xì)胞。
2、收集的藻細(xì)胞放于液氮中冷凍半個小時后,在研缽中研磨成粉末,轉(zhuǎn)移到 1.5mL 的滅菌離心管中,加入總體積 700μL 裂解緩沖液(100mM EDTA, pH 8.0;10 mM Tris-HCl, pH 8.0;1% SDS;200 μg/mL Protease K)放于55 ℃溫浴 3 h,其間不時搖動。
3、待溶液澄清透亮裂解*后,用一倍體積的平衡酚抽提一次, 吸取上清轉(zhuǎn)移至另一滅菌管中; 上清用一倍體積的平衡酚:lv仿(25:24)抽提一次,吸取上清移至另一滅菌管中;上清再用一倍體積的平衡酚:lv仿:異戊醇(25:24:1)抽提一次,吸取收集上清;收集的上清液加入十分之一體積 3 M 醋酸納和兩倍體積冰預(yù)冷的無水乙醇,-20 ℃過夜放置。
4、第二天12000 rpm離心20min后棄去上清,DNA 沉淀用 70%的乙醇洗滌兩次,晾干。
5、最終溶解于 50 μLTE 緩沖液 (10 mM Tris-HCl pH 8.0;1 mM EDTA)。
本方法用于塔瑪亞歷山大藻、原甲藻可行。

六、藍(lán)藻(以前在reply過,現(xiàn)在集中到這里)
solution I: 100 mM NaCl, 30 mM Tris.Cl (pH 7.8), 10 mM EDTA
solution II:0.1 M NaCl,0.2 M蔗糖,10 mM EDTA
裂解液: 0.25 mM EDTA, 0.5 M Tris.Cl, (pH 9.2),2.5% SDS,10 mM ?-巰基乙醇
TAE: 40 mM Tris-acetate, 1 mM EDTA
TE: 20 mmol/l Tris. Cl (8.0), 1 mmol/l EDTA (8.0)
1、稱取1 g干藻粉置于eppendorf 管中;
2、加入0.5 ml solution I,振蕩1 min;
3、 10,000 rpm離心1 min,棄上清;
4、重新加入0.5 ml solution I洗滌,收集沉淀;
5、用0.6 ml solution II懸浮沉淀后,加入0.2 ml 裂解液,劇烈振蕩1 min;
6、55 ?C水浴1 h;
7、加入等體積的酚/lv仿/異戊醇抽提兩次(10,000 rpm, 8 min);
8、用等體積的lv仿/異戊醇(10,000 rpm, 8 min)抽提1次后收集上清;
9、 加入1/10體積的3 M NaAc(pH 5.2)和2倍體積的無水乙醇;
10、室溫沉淀20 min, 10,000 rpm離心8 min;
11、70 %乙醇洗滌沉淀除鹽兩次并吹干;
12、50 ?l ddH2O溶解沉淀;
13、 加入RNaseA去RNA,電泳檢測后- 20 ?C保存?zhèn)溆谩?br/>本方法用于螺旋藻、節(jié)旋藻可行。

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